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小鼠脾臟樹突細胞的分離-膠原酶消化制備脾臟細胞懸液

2010-07-16 [3173]
輔助方案:
膠原酶消化制備脾臟細胞懸液
 
實驗材料:
1.    4000U/ml膠原酶D,融化后置于冰上
2.    HBSS,已滅菌,含Ca+、Mg2+(購置于Life Technologies)
3.    小鼠脾臟
4.    皮下注射針,22G×11/2in內(nèi)徑(Becton Dickinson)
5.    10ml、5ml一次性注射器(如Becton Dickinson)
6.    100mm直徑培養(yǎng)皿(如Falcon)
7.    2個高壓滅菌鍋的鋸齒狀解剖鑷(如Roboz)
8.    高壓滅菌的不銹鋼網(wǎng):將40目的不銹鋼網(wǎng)剪成5cm×5cm的小方格,向下折疊邊緣,然后將四邊彎成淺的矩形碗;錫箔紙包裹后高壓滅菌。
 
實驗方法:
1.    將2管1ml的4000U/ml膠原酶D稀釋(足夠用于20個脾臟):1ml加入9ml HBSS(稀釋至4000U/ml,步驟8使用),1ml加入39ml的HBSS(稀釋至100 U/ml)。置于冰上。
2.    將22G針頭連接在10ml的注射器上,充滿100 U/ml的膠原酶。將10ml的100 U/ml溶液加入100mm的培養(yǎng)皿中。
3.    取另外一個直徑100mm的培養(yǎng)皿進行操作。一只手拿鑷子,另一只手拿注射器,拇指放在活塞上。用鑷子夾住小鼠脾臟,用針頭刺入脾臟被膜的狹窄邊緣,注入100 U/ml膠原酶100ml。用鑷子將脾臟推向針頭,使針頭前進幾毫米。重復注射膠原酶,繼續(xù)直到1ml膠原酶都注射入脾臟,針頭從另一端刺穿脾臟。
4.    用針頭撕開脾臟,將其轉(zhuǎn)移至含膠原酶的培養(yǎng)皿中(步驟2)。重復操作,直到所有脾臟都注射和撕開。
5.    從第二個培養(yǎng)皿中收集細胞懸液加入到置于冰上的50ml離心管中。用3ml 100 U/ml的膠原酶漂洗培養(yǎng)皿后加到上述50ml離心管中。
6.    加入3ml 100 U/ml膠原酶至培養(yǎng)皿中。將撕碎的脾臟依次轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)皿。用2個鑷子將它們撕成邊長1mm的小碎塊,使其能通過5ml吸管的內(nèi)徑。當所有的脾臟都撕碎后,將先前放置脾臟碎塊的培養(yǎng)皿中的膠原酶溶液加入進來,用5ml吸管猛烈吹打多次。
7.    傾斜培養(yǎng)皿,將大塊碎片除開,將細胞懸液轉(zhuǎn)移至第5步的置于冰上的50ml離心管中。用幾毫升100 U/ml的膠原酶洗滌培養(yǎng)皿后加入至離心管中。
8.    在培養(yǎng)皿留下的脾臟碎塊中加入10ml 400 U/ml的膠原酶。吹打數(shù)次后于培養(yǎng)箱里放置30-90min。
9.    在孵育的zui后階段,猛烈吹打碎片,將其吸至直徑100mm培養(yǎng)皿的無菌鋼網(wǎng)上。
10.    用鑷子固定鋼網(wǎng)一端,用幾毫升100 U/ml膠原酶洗滌碎塊,然后用無菌的5ml注射器活塞碾磨碎塊。搗爛直到所有的紅色物質(zhì)從組織中去除。再用幾毫升100 U/ml膠原酶洗滌鋼網(wǎng)。
11.    將鋼網(wǎng)從培養(yǎng)皿中拿開,丟棄無色的黏附的被膜碎塊。猛烈地吹打培養(yǎng)皿中的液體,將其轉(zhuǎn)移至步驟7的50ml離心管里。用幾毫升100 U/ml膠原酶洗滌培養(yǎng)皿后一同加入到離心管中(約有0.5%為樹突細胞或者更少)。
12.    如果需要,即可用高密度的BSA離心。
 
附錄:
    抗體偶聯(lián)的綿羊紅細胞(EA):
以PBS洗滌2.5ml收集的綿羊紅細胞(Alsever液中提??;Cocalico)3次,每次洗滌后均以350g離心5min。然后用新鮮PBS稀釋為5%細胞懸浮液(109個細胞/ml)。將高致敏的兔抗紅細胞血清于5%細胞懸液以1:50稀釋(可能形成亞凝集劑量的抗體)。室溫下孵育2h,偶爾溫和地顛倒溶液。用RPMI1640(Life Technologies)洗滌形成的EA3次,隨后以PBS將EA稀釋為5%細胞懸液。于4℃保存2周,使用前再以RPMI洗滌一次。
 
    RPMI-5*培養(yǎng)基:
        RPMI1640培養(yǎng)基(Life Technologies),含有:
        5%FBS,56℃熱滅活1h
        10mmol/L HEPES
        20mg/ml硫酸慶大霉素(Life Technologies)
        50mmol/ml 2-ME
        過濾除菌
 
     高密度BSA溶液:
在1L容量瓶中,加入186ml PBS,29ml 1mol/L NaOH,65ml水(小心操作,注意液體不要再瓶內(nèi)飛濺)。不要攪拌,將106g BSA(Cohn fraction V,推薦采用*BSA)鋪在溶液表面,蓋上錫紙,冷藏過夜,使BSA慢慢溶解。
第二天,溫和搖晃已變?yōu)槌吻?、微褐色的溶液;測量折射指數(shù),到小數(shù)點后第四位。25℃條件下,正確密度的BSA(1.080g/ml)的折射指數(shù)在1.384-1.385。為校正折射指數(shù)后,用試紙檢測pH。pH應在7.0-7.4,一般無需調(diào)整。
無菌過濾溶液。將47mm濾膜(Millpore type)置于一個500ml的過濾裝置(Nalgene#156-4045)頂部,先以少量BSA潤濕濾膜。真空抽濾數(shù)分鐘,直到BSA濾出為止。取下真空泵,小心將剩余的BSA溶液加入濾器上部的儲存器中(避免起泡沫。使用真空泵和濾器過濾剩余的BSA,≥10min)。4℃可保存3個月。


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